免疫组化

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项目介绍

免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是一种生物医学技术,它用于研究组织样本中的蛋白质表达和定位。这项技术结合了免疫学和组织学的原理,允许科学家和医生观察和分析组织中特定蛋白质的分布和表达水平。

以下是免疫组化的主要步骤:

  1. 样品获取:免疫组化通常使用组织切片,这些切片可以来自活体组织标本、活检组织、病理学切片或细胞培养物。样品需要进行适当的处理和固定以保持其结构。
  2. 抗原检出和修复:组织样本中的抗原需要被检出,通常需要使用抗原修复步骤。这可以通过加热、酶处理或其他方法来实现。
  3. 抗体标记:特定的抗体(一抗)被用来检测感兴趣的蛋白质。这些抗体可以是单克隆或多克隆抗体,它们在实验之前通常需要被标记上色素或荧光染料。
  4. 抗体结合:标记的抗体与目标抗原结合。如果组织中存在目标抗原,抗体将会与之结合,形成抗原-抗体复合物。
  5. 洗涤:洗涤步骤用来去除未结合的抗体,以减少非特异性结合。
  6. 二次抗体(次级抗体):如果使用标记的一抗,通常需要添加二次抗体(次级抗体),它们会识别一抗并加强信号。次级抗体可以与酶标记、荧光标记等结合。
  7. 信号检测:标记的抗体或次级抗体会产生可视信号,这可以是染色、荧光或其他检测方法。染色通常使用色素如DAB(3,3'-二氨基联苯)来显示信号。
  8. 显微镜观察:最后,使用显微镜观察组织切片,以确定感兴趣的蛋白质在组织中的分布和表达水平。这允许研究者研究组织的结构和特定蛋白质的定位。
取样要求
  1. 样品固定:组织样本必须进行适当的固定,以保持其形态结构和蛋白质抗原的完整性。常用的固定剂包括福尔马林(formalin)和乙醇。
  2. 切片制备:组织样本通常需要被切成薄片,以便于光学显微镜观察。这些组织切片通常称为组织切片或切片标本。
  3. 抗原修复:组织切片中的抗原可能会在固定过程中变性,需要进行抗原修复。这通常通过加热或化学处理(如热诱导的抗原修复或酶诱导的抗原修复)来完成。
  4. 标本存储:组织样本应在适当的条件下存储,以防止抗原降解和样本质量的降低。冷藏或冷冻通常是推荐的存储方式。
  5. 切片质量:组织切片的质量对于免疫组化非常重要。确保切片的厚度和完整性,并避免伤害或裂纹。
  6. 抗体选择:选择适当的一抗(主抗体),这是检测感兴趣蛋白质的关键。一抗的选择需要考虑其特异性、亲和性和已知的性能。
  7. 负对照:需要同时进行负对照实验,使用不含目标抗原的切片,以确保检测的信号是特异性的。
  8. 实验控制:确保实验过程中有适当的实验控制,包括已知的阳性对照和负对照。
  9. 样品信息记录:记录样本的来源、处理和处理过程,以便追踪样品历史和研究结果的可靠性。
  10. 质量控制:定期进行实验的质量控制,确保实验的可重复性和可靠性。
  11. 合适的显微镜设备:使用高质量的显微镜设备观察和记录免疫组化结果,确保可以得到清晰的图像。
常见问题
  1. 非特异性染色:问题:非特异性抗体结合或染色,导致背景染色过多,使得难以识别目标结构。解决方法:使用合适的阻断剂,如非脂奶粉或BSA(牛血清白蛋白),优化抗体浓度,或尝试其他抗体。
  2. 抗体特异性问题:问题:抗体可能对非特定的抗原或结构产生反应,导致假阳性结果。解决方法:进行抗体验证,包括阳性和阴性对照实验,确保抗体的特异性。
  3. 抗原修复问题:问题:抗原修复不足或过度修复可能影响抗体的结合。解决方法:优化抗原修复条件,可能需要尝试不同的修复方法。
  4. 染色不均匀:问题:染色不均匀,导致样本中的某些区域过度染色,而其他区域染色不足。解决方法:优化染色条件,确保染色液的均匀覆盖整个切片。
  5. 细胞核染色问题:问题:细胞核染色可能过度或不足,使得细胞核难以识别。解决方法:优化染色条件,包括染色时间和染色液浓度。
  6. 质量控制:问题:缺乏质量控制步骤可能导致实验的不可靠性。解决方法:在实验中包括阳性和阴性对照,确保实验可重复性和准确性。
  7. 样品问题:问题:样品可能存在质量问题,如坏掉的组织切片或不适当的固定。解决方法:确保使用高质量的样品,遵循适当的样品处理和固定步骤。
  8. 抗体质量问题:问题:抗体质量可能不佳,包括陈旧的或受污染的抗体。解决方法:使用高质量、新鲜的抗体,确保抗体的存储和使用符合最佳实践。
  9. 显微镜问题:问题:显微镜可能存在问题,如镜片不清洁或不适当的放大倍数。解决方法:确保显微镜设备的维护和校准,并进行适当的镜片清洁。
服务优势

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